鼠前列腺增生模型制备
方法：孕16～18 d的近交系BALB/C小鼠经脱颈离断处死，取出胚胎，在含在青霉素和链霉素的0℃～4℃ Dehank液中，体视显微镜，用于准确地取材。
于立体显微镜下微解剖，修剪掉胚胎膀胱，Wolffian和Mullerian管，剩下完整的尿生殖窦(Urogenital sinus，UGS)。将UGS置入1%的胰蛋白酶溶液中，4℃，消化120 min，以去掉上皮成分保留UGM。用含50%的小牛血清培养液清洗，终止胰蛋白酶的消化作用。制备好的UGM保存于Dehank培养液中，3 h内使用。整个操作过程均在无菌条件下进行［1］。
　　为验证制备的UGM符合本实验要求，将UGM作如下研究：①解剖显微镜下，观察UGM是否残留有Wolffian和Mullerian管等附属结构；②UGM连续切片，HE染色观察是否残存上皮成分；③为进一步证明消化后的UGM无上皮成分并具有活性，将UGM种植于同系雄鼠肾包膜下，四周后切取移植物，作连续切片，HE染色观察。
1.2　动物接种
　　成年雄性近交系BALB/C小鼠30只，随机分为：正常对照组，假手术组，UGM种殖组，每组10只。乙醚吸入麻醉，妥善将鼠固定于操作台。腹正中切开，暴露膀胱及腹侧前列腺，将制备好的UGM种植于腹侧前列腺内。假手术组除不种植UGM外，余步骤同上。
1.3　观察方法
　　接种后，普通喂养，30 d处死动物，取出腹侧前列腺，称其湿重，计算出各组前列腺湿重的平均值。前列腺标本用10%甲醛固定，石蜡包埋，切片，HE染色。
1.4　统计学处理
　　各组前列腺湿重以±s表示，均数间比较采用t检验。

2　结果

2.1　制备的UGM
　　制备的UGM在解剖显微镜及下HE染色观察，无残存附属结构，无上皮细胞存在，见图1。UGM在肾包膜下长生四周后，切取并作HE染色观察，细胞形态与接种前一致，无腺样结构。进一步说明无上皮成分，并具有活性，符合本实验要求。